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555偶联试剂盒(尤其适合分子量6-20 KD样本)-LinKine™-AbFluor™
LinKine™ AbFluor™ 555 Labeling Kit (Optimized for samples with molecular weight of 6 KD to 20 KD)
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活动截止时间:2024年1月31日
                            
                                
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亚科因生物研发的LinKine™ AbFluor™ 555偶联试剂盒(尤其适合分子量6-20 KD样本) (LinKine™ AbFluor™ 555 Labeling Kit, Optimized for samples with molecular weight of 6 KD to 20 KD) 是一套专为6–20 kD小分子蛋白、抗体片段或肽段设计的荧光标记系统,利用活化AbFluor™ 555染料与目标蛋白的伯胺基团快速偶联,通过一步法反应与柱式纯化,即可在90 min内获得高纯度、高荧光产率的标记产物。
AbFluor™ 染料是一系列高度水溶性的荧光染料,覆盖可见光到近红外区,核心结构经过创新修饰,使其在亮度、光稳定性及水溶性方面均优于传统商业染料。AbFluor™ 555 为橙红色荧光染料,最佳激发波长 555 nm,发射峰位于 565–575 nm,可与氩激光器、YAG 激光器及主流荧光成像设备完美匹配;同时背景低、信噪比高,是 DyLight 549 与 Alexa Fluor 555 的理想替代品。该染料与蛋白偶联后,仍能保持蛋白的天然构象与生物活性,适用于后续荧光成像、流式检测、FRET 等实验。
本试剂盒适用于蛋白偶联相关研究,包括但不限于:小分子抗体片段、激素、细胞因子、肽类探针的荧光标记;后续可用于荧光免疫检测、细胞表面/内部分子示踪、流式细胞术、共聚焦/超分辨成像及荧光共振能量转移 (FRET) 实验。
                                    | 中文名称 | 555偶联试剂盒(尤其适合分子量6-20 KD样本)-LinKine™-AbFluor™ | 
| 英文名称 | LinKine™ AbFluor™ 555 Labeling Kit (Optimized for samples with molecular weight of 6 KD to 20 KD) | 
| 产品货号 | KTL0531 | 
| 偶联物 | AbFluor™ 555 | 
| 试剂盒组分 | • 活化的 AbFluor™ 555 偶联物溶液 • AbFluor™ 555 偶联缓冲溶液 • 纯化柱(0.5 mL,3KD)  | 
                                        
| 注意事项 | • 待标记样本的初始浓度不应低于2 mg/ml。 • 请注意,缓冲液中不允许含有氨基的组分,这会影响偶联效果。 • 少量的BSA不会影响结果,建议使用PBS作为所需的缓冲液。  | 
                                        
| 保存建议 | 该试剂盒在-20℃条件下可保存6个月。 | 
| 运输条件 | 冰袋运输(蓝冰) | 
| 警告 | 本文列出的产品仅供研究使用,不适用于人类或临床诊断。我们产品所推荐应用,不是建议使用我们的产品去违反任何专利或许可证。对于使用本产品可能发生的专利侵权或其他违规行为,我们不承担任何责任。 | 
待标记样本的初始浓度应高于2 mg/mL,建议蛋白浓度达到2.5 mg/mL以上效果最佳,否则实验前需进行浓缩以提高浓度。待标记样本的组分(或储存缓冲液)应符合如下要求:
待标记样本的缓冲液应满足如下要求:
| 缓冲液成分 | 要求 | 
|---|---|
| PH | 6.5-8.0 | 
| 无胺缓冲液 MES HEPES,PBS | ✓可含有 | 
| 螯合剂 (e.g. EDTA) | ✓可含有 | 
| 甘油(Glycerol) | 含量 < 50% | 
| 牛血清白蛋白(BSA) | 含量 < 0.1% | 
| 甘氨酸(Glycine) | ✗不能含有 | 
| 含氨基成分 | ✗不能含有 | 
不同规格建议的最适标记样本量和标记体系如下:
| 试剂盒规格 | 最适标记的样本量 | 最适的标记体系 | 
|---|---|---|
| 1 mg | 1 mg | 500-750 µL | 
| 3×100 µg | 3×100 µg | 3×50-3×75 µL | 
注意:请根据实际样品量,相应放大或缩小试剂盒各组分在反应体系中的体积。
以下操作步骤是以3×100 µg规格为例,其它规格的试剂用量请进行等比调整。如果需要调整体积,请保持样本量不变更改标记体系中FITC labeling solution、Activated FITC solution和去离子水的体积。
注:步骤(1)/(2)属于标记步骤。
注:步骤(3)/(4)/(5)属于纯化步骤。
偶联产物避光条件下可稳定保存一个月。若需长期储存,请加入等体积甘油分装并于-20℃下避光保存,避免反复冻融。
C (mg/mL) = {[A280-(Amax×CF)]/1.4}×稀释因子
其中:C是指实验收集的偶联物浓度;稀释因子是指在光度测量时的稀释倍数(详见备注);A280和Amax分别是指在280 nm处的吸光度以及在最大吸收波长(FITC的最大吸收波长为492 nm)处的吸光度;CF是校正因子,FITC的CF值为0.254;1.4是指FITC(IgG)的消光系数,为7300 mL/mg。
DOL = (Amax×Mwt)/(ε×C×稀释因子)
其中:Amax指在最大吸收波长处的吸光度(FITC的最大吸收波长为492 nm);稀释因子是指在光度测量时的稀释倍数;C是指实验收集的偶联物浓度;Mwt是指待标记样本的分子量;ε是荧光染料的消光系数,FITC的消光系数为7300。
备注:过柱洗脱的偶联物直接用于吸光度检测可能浓度过大,因此需要稀释到适当浓度(蛋白测定仪的浓度范围)。稀释倍数(即稀释因子)需要从起始样本质量以及洗脱得到的偶联物的总体积来进行预估,如未经稀释则稀释因子为1。
问1:浓缩后样本浓度仍低于1-2 mg/mL?
答1:如果浓缩后样本浓度仍小于1-2 mg/mL可适当调整标记体系的体积,但最终浓度应大于1 mg/mL。步骤(1)中FITC labeling solution的体积应为标记体系体积的10%,步骤(2)中Activated FITC solution的体积保持不变,可不添加去离子水,您也可以根据自己的实验进行适当调整。
问2:待标记样本分子量大小不同,如何选择合适的纯化柱?
答2:本产品配备的超滤管适用于分子量为6-20 KD的样本。若您需要偶联的样本分子量大于20 KD,为保证偶联最佳效果,需另行配备大小合适的超滤管。
问3:待标记样本分子量与FITC相近?
答3:如果样本分子量与FITC相近,可在进行完此说明书对应的标记步骤后加入30 µL 0.5 µM NH4Cl,37℃下孵育10 min,以淬灭游离的FITC,无须进行此说明书对应的纯化步骤。
A: 是通用型的。
A: 推荐1mg的规格,选用超滤管3K的超滤管的型号。
A: 如按照说明书的操作进行实验,可保证超过90%的偶联效率。
A: 做吸光度检测和免疫实验检测。
A: 如果是普通蛋白分子的话,查询蛋白的氨基酸一级结构就可以知道是否有游离氨基。
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