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应用指南 2026-02-02 阅读

做铁死亡、自噬、炎症课题时,如何把ROS纳入readout指标?

铁死亡(ferroptosis)、自噬(autophagy)、炎症(inflammation)是近几年非常热门的研究方向,而 ROS 几乎在这三类课题中都时常出现。

然而具体到实验设计时,很多人会遇到这样的困惑:

  • 铁死亡课题里,只测总 ROS 是否足够?要不要专门测“脂质 ROS”?
  • 自噬研究中,ROS 是诱因还是结果?应该放在 readout 的哪一环?
  • 炎症模型下,巨噬细胞 / 中性粒细胞的 ROS 该怎样与细胞因子等指标配合?

这篇文章尝试从课题场景出发,讨论在铁死亡、自噬和炎症研究中,如何更合理地把 ROS 纳入整套 readout 体系。

检测本身仍然以基于 DCFH-DA 的ROS试剂盒为例。


一、铁死亡:关注“脂质过氧化”背景下的 ROS

铁死亡的几个核心特征是:

铁依赖性、脂质过氧化失控、防御系统(如 GPX4–GSH)受损。

因此,如果只报告一个“总 ROS”柱状图,往往会被认为更像一般的氧化应激,而不是典型铁死亡事件。

1. 铁死亡体系中 ROS 的定位

在铁死亡模型里,可以把主要 readout 大致分为三类:

  1. 氧化压力相关:
  2. 脂质过氧化相关:
    • MDA含量、4-HNE、BODIPY-C11 阳性信号等;
  3. 防御系统相关:
    • GSH含量、GPX4 表达水平、系统 Xc⁻(SLC7A11)表达等。

ROS 在其中更适合作为“氧化压力背景”的一部分,配合脂质过氧化和防御指标一起解释,而不是单独担任“铁死亡指标”。

2. 组合 readout 的示例

一个常见且相对完整的铁死亡 readout 组合可以是:

  • ROS 检测:
    • 使用 DCFH-DA 测总 ROS,在铁死亡诱导剂(如 erastin、RSL3 等)处理中期与后期各设一个时间点;
  • 脂质过氧化:
    • 使用 MDA 检测试剂盒、BODIPY-C11 荧光探针等评估脂质过氧化程度;
  • 防御系统:
    • GSH 含量试剂盒 + GPX4/SLC7A11 蛋白表达(Western blot);
  • 细胞死亡与保护:
    • 细胞存活率(如 CCK-8)、形态变化、铁死亡抑制剂(如 Ferrostatin-1)救护实验。

这样的设计有助于在结果中形成一条相对清晰的链条:

诱导剂处理 → GSH/GPX4 下调 → ROS 与脂质过氧化升高 → 细胞发生铁死亡;

抑制或清除 ROS / 改善 GSH–GPX4 系统,可缓解脂质过氧化和细胞死亡。


二、自噬:将 ROS 视为“应激信号”,与 LC3/p62 结合解读

自噬研究中,ROS 的角色比较复杂:

  • 某些情况下,ROS 升高是诱导自噬的关键信号之一;
  • 也有情况是自噬通过清除损伤线粒体等方式,反过来降低 ROS;
  • 在强烈应激下,过量 ROS 又可能推动细胞从保护性自噬走向细胞死亡。

因此,自噬课题里测 ROS,更适合作为“细胞应激程度”的 readout,需要与自噬标志物联合解读。

1. 常见 readout 组合

在自噬课题中,一个比较常见的组合是:

  • 自噬标志:
    • LC3-II 水平及 LC3 puncta 形成
    • p62/SQSTM1 的表达变化;
    • 必要时可辅以 mCherry-GFP-LC3 报告系统等。
  • ROS:
    • DCFH-DA 检测总 ROS 水平;
    • 部分研究可进一步检测线粒体 ROS。
  • 干预验证:
    • 利用 NAC 等 ROS 清除剂;
    • 利用自噬抑制剂(如 3-MA、CQ)或基因敲降手段。

2. 时间点的选择建议

为了更好地区分因果关系,建议在不同时间点安排检测:

  • 处理早期(如 1–3 h)
    • 测 ROS,看是否迅速升高;
  • 处理中/晚期(如 6–24 h):
    • 测 LC3-II、p62 等自噬标志,观察自噬是否被激活或阻断;

在此基础上,再通过 ROS 清除剂、自噬抑制剂等干预,观察对自噬水平和细胞结局的影响,可以更清晰地说明 ROS 在自噬调控中的位置。


三、炎症:免疫细胞 ROS 既是压力指标,也是功能 readout

在炎症相关研究中,尤其是以巨噬细胞、中性粒细胞为主的模型中,ROS 既反映细胞受到刺激的程度,也是其执行杀菌、杀细胞功能的重要手段之一。

1. LPS 刺激下的巨噬细胞 ROS

以 RAW264.7 / THP-1 等细胞为例:

  • 刺激
    • LPS 或 LPS + IFN-γ 诱导炎症激活;
  • readout 组合:
    • ROS:DCFH-DA 检测胞内 ROS;
    • 炎症因子:qPCR / ELISA 检测 TNF-α、IL-6、IL-1β 等;
    • NO:Griess 法检测 NO 产生;
    • 适当时可合并 iNOS 表达分析。

在这样的组合中,ROS 可以和炎症细胞因子、NO 水平一起,用来表征“炎症激活程度”。

2. 呼吸爆发模型中的 ROS

对中性粒细胞和部分巨噬细胞来说,PMA 等刺激可诱导快速、短暂而强烈的呼吸爆发:

  • 使用 DCFH-DA 检测 ROS 峰值;
  • 同时可考虑测定吞噬功能、细胞外陷阱(NETs)形成等指标;
  • 常用于评估药物 / 处理对免疫细胞功能的影响。

在这类模型中,ROS 更直接地扮演“功能 readout”的角色。


四、如何在结果结构中“自然地”呈现 ROS?

从论文撰写的角度,可以考虑用“模型 → ROS → 下游事件”的顺序来安排图和结果段落,让 ROS 在整体逻辑中占有清晰的位置,而不是零散插入一张独立柱状图。

举几个示例思路:

1. 铁死亡研究

  • 图 1:铁死亡诱导剂对细胞存活率、形态的影响;
  • 图 2:GSH 含量、GPX4 表达变化(防御链条);
  • 图 3:ROS 水平与脂质过氧化(如 MDA、BODIPY-C11);
  • 图 4:铁死亡抑制剂或抗氧化剂的救护实验。

2. 自噬研究

  • 图 1:处理对 ROS 的影响(早期时间点);
  • 图 2:LC3-II、p62 等自噬标志的变化;
  • 图 3:ROS 清除剂 / 自噬抑制剂对上述变化的调节;
  • 图 4:细胞存活、凋亡等终点指标。

3. 炎症研究

  • 图 1:处理对巨噬细胞 ROS 的影响;
  • 图 2:炎症因子表达、NO 水平等;
  • 图 3:干预剂对 ROS 和炎症指标的双向调节;
  • 图 4:功能 readout(吞噬、杀菌能力、组织病理变化等)。

这样安排的好处是:读者可以很直观地看到 ROS 在整条通路中的位置,而不仅仅是一张孤立的荧光图或柱状图。


五、小结:在不同课题中给 ROS 一个清晰的“角色定位”

综合来看,ROS 在不同课题中的“身份”并不相同:

  • 铁死亡研究中,ROS 是脂质过氧化背景的一部分,需要与 MDA、4-HNE、GSH–GPX4 等指标配合,才能构成有说服力的铁死亡证据链;
  • 自噬研究里,ROS 更多地扮演应激信号或调控因子的角色,应与 LC3、p62、自噬流等 readout 结合讨论;
  • 炎症研究中,巨噬细胞、中性粒细胞的 ROS 既是应激标志,也是功能 readout,可与细胞因子、NO、吞噬/杀菌能力一起综合评估。

在实验操作层面,可以采用统一的 DCFH-DA ROS 检测流程(如商用 CheKine™ ROS 试剂盒的 SOP),

根据课题选择不同的刺激方式、检测时间点和搭配指标。

这样既有利于在实验室内部标准化操作,又便于在不同课题之间平滑迁移已有经验。


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