LYS赖氨酸含量检测与肺纤维化氨基酸代谢研究:指标怎么选、怎么搭配
做肺纤维化代谢研究,氨基酸通常是需要关注的一类指标。
成纤维细胞向肌成纤维细胞分化时,会合成大量胶原等细胞外基质,需要消耗相应的氨基酸。其中,甘氨酸和脯氨酸是胶原的重要组成氨基酸,精氨酸也能作为底物参与谷氨酸、脯氨酸等分子的生成。因此,在研究肺纤维化相关的代谢变化时,研究人员往往会同时观察多种氨基酸的含量。
不过,实际做实验时会遇到几个问题:该检测哪些氨基酸?什么时候用质谱,什么时候用试剂盒?细胞和组织样本怎么分配?不同干预组的数据又该如何比较?
2025 年,Liu 等人在 Cellular and Molecular Life Sciences 发表了一项关于 circRNA 与肺纤维化的研究。研究人员先通过组学筛选差异代谢物,再利用商品化试剂盒验证,随后结合基因干预实验分析相关机制。
这项研究提供了一个可以参考的实验思路。下面结合论文中的检测设计,介绍 CheKine™ LYS赖氨酸含量检测试剂盒(微量法,货号 KTB1470)在肺纤维化研究中的应用,以及多指标检测时需要考虑的问题。
一、文献中的氨基酸代谢研究是怎么做的?
这项研究主要关注 circ0066187 如何促进成纤维细胞向肌成纤维细胞分化。
论文介绍,特发性肺纤维化(IPF)的药物治疗仍存在局限。吡非尼酮和尼达尼布能够减缓用力肺活量下降,但无法逆转已经形成的纤维化。
与此同时,成纤维细胞的代谢异常与 TGF-β1 介导的促纤维化过程有关。研究人员因此将代谢组学和蛋白质组学结合起来,寻找可能参与肺纤维化的代谢通路。
整个实验主要包括四个阶段。
| 实验阶段 | 具体做法 | 主要材料或方法 |
|---|---|---|
| 模型建立 | MRC-5 成纤维细胞使用 5 ng/mL TGF-β1 处理;小鼠气管内给予博来霉素(BLM)5 mg/kg,28 天后取材 | 细胞模型、小鼠模型 |
| 组学筛选 | 对 TGF-β1 处理 0、6、72 h 的细胞进行非靶向代谢组和蛋白组分析,寻找共同富集的通路 | UHPLC-Q-TOF MS、LC-MS/MS |
| 指标验证 | 从三条共同富集的通路中筛选 7 个差异代谢物和 6 个差异蛋白,在细胞和小鼠肺组织中检测 | 商品化检测试剂盒、Western blot |
| 机制干预 | 敲低或过表达 circ0066187,使用 miR-29b-2-5p mimic 或 inhibitor,干预 STAT3,并开展回补实验 | 细胞转染、代谢物检测、蛋白检测 |
研究筛选出的 7 个差异代谢物分别为:
谷氨酰胺、脯氨酸、AMP、精氨酸、苯丙氨酸、赖氨酸和色氨酸。
其中,赖氨酸检测使用了 KTB1470。
赖氨酸在不同实验组中有什么变化?
论文报告,在 TGF-β1 处理的成纤维细胞和 BLM 小鼠肺组织中,赖氨酸含量均较对照组降低。
后续干预实验观察到以下变化:
circ0066187 干预: 敲低 circ0066187 后,赖氨酸升高;过表达后,赖氨酸降低。
miR-29b-2-5p 干预: 加入 mimic 后,赖氨酸升高;加入 inhibitor 后,赖氨酸降低。
STAT3 干预: 敲低 STAT3 后,赖氨酸升高;过表达 STAT3 后,赖氨酸降低。
回补实验: 相应的回补干预能够逆转上述变化。
结合其他代谢物、蛋白及细胞表型的实验结果,作者提出:circ0066187 可能通过吸附 miR-29b-2-5p,上调 STAT3,并经 STAT3 介导的代谢信号通路促进肺纤维化。
作者同时指出,相关代谢物和蛋白仍需要进一步开展临床样本相关性分析,以及功能和机制研究。
为什么先做质谱,再用试剂盒?
观察这项研究的实验流程,可以发现两类检测方法承担着不同任务。
非靶向代谢组学主要用于筛选。研究人员通过质谱分析,寻找模型中发生变化的代谢物,再结合蛋白组学结果筛选候选通路。
确定候选代谢物之后,研究进入多组验证阶段。此时需要在细胞、小鼠组织和不同干预组中反复检测相同指标,商品化试剂盒就可以用于这些后续实验。
这种安排也适合需要检测多个代谢指标的纤维化研究:先通过组学明确研究对象,再根据目标指标、检测方法的适用性及实验规模,选择合适的验证工具。
二、准备检测赖氨酸时,实验方案怎么安排?
如果计划在自己的纤维化模型中使用 KTB1470,需要提前考虑样本数量、细胞量、组织分配、结果归一化和对照设置。
1. 先计算检测总量,避免试剂不够
在上述研究中,7 个代谢物需要在多组干预实验中反复检测,包括 circ0066187 敲低与过表达、miRNA mimic 与 inhibitor、STAT3 干预以及两组回补实验,每个图的重复数为 6。
设计类似实验时,可以先按照以下关系计算:
检测总量 = 待测指标数 × 实验组数 × 每组重复数
还需要将标准曲线所占用的反应管计算进去。
以 KTB1470 为例,假设设置 4 个实验组,每组 6 个样本:
样本检测:4 × 6 = 24 管
标准曲线:7 个浓度点加空白,每个 1–2 管,共 8–16 管
一轮检测合计:32–40 管
如果需要检测多个指标,或者不同批次都要重新制作标准曲线,还应分别核算试剂用量。
2. 细胞数量要和其他检测项目一起安排
根据 KTB1470 的细胞样本提取流程,每个样本需要收集约 5×10⁶ 个细胞,并加入 1 mL Extraction Buffer 进行提取。
按照前面 24 个细胞样本计算:
24 × 5×10⁶ = 1.2×10⁸ 个细胞
这是赖氨酸检测所需的细胞总量,还没有包含 Western blot、qPCR 等其他实验项目。
对于需要转染和 TGF-β1 处理的 MRC-5 细胞,建议在铺板之前就分配好各组细胞数量,避免到取样时才发现材料不足。
如果细胞数量有限,可以先联系技术支持,确认是否能够等比例缩小提取体系。不建议在未经验证的情况下自行调整提取体积。
技术咨询:400-6800-830。
3. 小鼠肺组织需要提前分配
在 BLM 诱导的肺纤维化模型中,同一只小鼠的肺组织可能需要用于多个检测项目,包括:
Western blot 蛋白检测
qPCR 基因表达检测
HE、Masson 组织学染色
氨基酸等代谢物检测
KTB1470 的动物组织提取流程每次使用约 0.1 g 组织。
因此,取材前就应明确每个检测项目需要多少组织,以及不同肺叶分别用于什么实验。
用于组织学固定的样本不能再按新鲜组织提取流程检测代谢物。做组织学与做代谢物检测的组织,需要在取材时分开处理。
另外,BLM 诱导的肺纤维化病灶通常分布不均匀。为了提高不同样本之间的可比性,应尽量统一取样部位。这属于动物模型取样的一般实验注意事项,并非 KTB1470 特有的要求。
如果取样量不足,也可以向技术支持确认是否能够缩小提取体系。
4. 数据按什么单位报告?
细胞和组织样本的组成不同,检测结果的归一化方式也需要区分。
细胞样本可以按照细胞数量报告,例如 μmol/10⁴ 个细胞,也可以按照蛋白含量进行归一化。
组织样本则可以根据组织质量或蛋白含量报告结果。
这里有一个需要考虑的问题:随着肺纤维化发展,肺组织中的细胞和细胞外基质比例会发生变化。
因此,按组织质量归一化与按蛋白含量归一化,得到的数据需要结合各自的归一化依据解释。实验方法中应写清楚所采用的方式,并在不同实验组之间保持一致。
如果需要检测样本蛋白浓度,可配合使用亚科因 BCA 蛋白质定量试剂盒(货号 KTD3001)。
5. 不同干预组要设置对应的对照
基因干预实验涉及多种处理方式,对照组不能混用。
例如,论文中的 si-circ0066187 需要对应 NC 对照,过表达实验对应空质粒(BP)对照。
使用 miR-29b-2-5p mimic 或 inhibitor 时,也需要分别设置相应的对照。
分析不同干预条件下的赖氨酸变化时,应明确每一组数据对应哪个参照组,避免将不同对照条件下的结果直接混合比较。
三、KTB1470 测到的赖氨酸含量,该怎么理解?
KTB1470 采用茚三酮显色法。其检测原理涉及茚三酮与游离氨基发生显色反应,再根据赖氨酸标准曲线换算检测结果。
使用这种方法时,需要注意检测的特异性。
茚三酮显色体系的响应并不只来自赖氨酸,也可能受到其他含游离氨基物质的影响。
因此,试剂盒的检测结果是依据赖氨酸标准曲线换算得到的显色响应,不能直接等同于经过特异性分离鉴定的赖氨酸绝对含量。
在多组细胞或组织样本中,如果使用相同的前处理和检测条件,可以利用这一结果观察不同处理组之间的变化,但解释时仍需考虑样本基质差异及其他干扰因素。
如果研究主要关注某种干预是否伴随相关显色指标的变化,可以考虑使用这类方法进行比较。
如果需要确认变化是否特异性来自赖氨酸,或者需要获得更准确的赖氨酸绝对含量,则建议配合 LC-MS 等具有分离和特异性检测能力的方法。
在正式确定检测方案之前,也可以结合样本类型、研究目的和预期数据用途,向技术支持确认 KTB1470 是否适用。
技术咨询:400-6800-830。
四、肺纤维化研究中,赖氨酸可以搭配哪些指标?
研究肺纤维化时,单看一种氨基酸的变化,通常不足以解释整个纤维化过程。
可以根据研究目的,将检测项目分成表型指标、代谢指标和归一化指标三类。
| 检测类别 | 推荐指标 | 用途与注意事项 |
|---|---|---|
| 纤维化表型 | α-SMA、波形蛋白、I 型胶原;HE、Masson 染色 | 用于观察成纤维细胞表型变化及肺组织纤维化程度 |
| 氨基酸代谢 | 赖氨酸(KTB1470) | 用于观察不同处理条件下相应检测指标的变化,需注意显色法的特异性限制 |
| 氨基酸代谢 | 脯氨酸(KTB1430) | 脯氨酸是胶原的重要组成氨基酸,可与赖氨酸结合观察 |
| 氨基酸代谢 | 谷氨酸(KTB1440) | 用于检测谷氨酸;需与谷氨酰胺检测区分 |
| 结果归一化 | BCA蛋白质定量(KTD3001) | 按蛋白含量报告组织或细胞样本检测结果时使用 |
为什么可以搭配脯氨酸?
在上述研究中,肺纤维化模型里的脯氨酸升高,而赖氨酸降低。
脯氨酸本身也是胶原的重要组成氨基酸,与胶原合成及相关代谢过程有密切联系。
如果实验关注纤维化过程中氨基酸代谢的变化,可以将脯氨酸与赖氨酸一同纳入检测范围,观察两者在不同处理条件下的变化。
不过,两个指标的变化方向不同,并不能直接证明它们之间存在特定的代谢转化关系,仍需要结合其他实验结果解释。
谷氨酸和谷氨酰胺不要混淆
论文讨论了谷氨酰胺经谷氨酰胺酶作用转化为谷氨酸,以及相关代谢过程与胶原稳定性的联系。
如果准备检测这一方向,需要先明确研究对象。
亚科因 KTB1440 检测的是谷氨酸,并非谷氨酰胺。两者属于不同的代谢物,不能因为名称接近就相互替代。
正式实验前,先确认检测范围
多个代谢物同时检测时,样本用量和试剂消耗都会增加。可以先用少量样本进行预实验,查看样本的 ΔA 是否落在标准曲线对应的范围内,再确定正式实验的取样量和稀释倍数。
按照 KTB1470 所述的处理要求:
当样本 ΔA 大于 1.8 时,可用去离子水稀释样本,并在计算结果时乘以相应的稀释倍数。
当样本 ΔA 低于最低浓度标准品(0.125 μmol/mL)对应的 ΔA 时,可适当增加样本量。
具体操作和结果计算应以产品随附说明书为准。
五、总结:氨基酸检测放在实验的哪个阶段更合适?
Liu 等人的研究采用了较完整的实验路线:先用代谢组学和蛋白质组学筛选候选指标,再通过细胞、动物模型和基因干预实验验证相关变化,并进一步分析 circ0066187、miR-29b-2-5p 与 STAT3 之间的关系。
对于计划开展肺纤维化氨基酸代谢研究的实验人员,这套流程有一定参考价值。
如果已经明确需要检测赖氨酸,可以根据研究目标考虑 KTB1470。该产品支持细胞和动物组织样本的前处理,并可使用常规酶标仪完成检测,适合纳入多组样本的实验安排,但使用时需要注意茚三酮显色法的特异性限制。
正式实验前,建议先确认三件事:
检测数量: 计算指标数、实验组数、重复数和标准曲线所需的反应总量。
样本准备: 提前安排细胞数量和动物组织分配,兼顾 Western blot、qPCR 及组织学检测。
方法适用性: 通过预实验确认样本信号范围、稀释条件和归一化方式,并根据研究目标判断是否需要 LC-MS 等特异性方法补充验证。
把这些内容提前安排好,能够减少正式实验过程中因样本不足、检测范围不合适或数据解释不清而产生的问题。
参考文献
Liu B, et al. circ0066187 promotes pulmonary fibrogenesis through targeting STAT3-mediated metabolism signal pathway. Cellular and Molecular Life Sciences, 2025, 82:79.
DOI:10.1007/s00018-025-05613-z
相关阅读
本产品仅供科学研究使用,不适用于人类或临床诊断。具体操作请以产品随附说明书为准。
