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彗星法DNA损伤分析试剂盒(3孔载玻片)
Comet Assay Kit (3-Well Slides)
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活动截止时间:2024年1月31日
                            
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亚科因生物研发的彗星法DNA损伤分析试剂盒(3孔载玻片) (Comet Assay Kit, 3-Well Slides) 是一套基于单细胞凝胶电泳(SCGE)原理,专为细胞水平 DNA 损伤快速评估而设计的完整检测系统。通过 3 孔专用载玻片与即用型试剂组合,可在荧光显微镜下直观呈现 DNA 断裂“彗星”图谱,帮助研究者高效评价细胞状态。
当细胞受到辐射、氧化应激、药物或重金属等损伤因素作用后,DNA 可能发生单链或双链断裂。本试剂盒利用单细胞凝胶电泳(SCGE)技术,将单个细胞包埋于低熔点琼脂糖中,经裂解液去除细胞膜与组蛋白后,在碱性条件下使 DNA 解旋;随后在电场作用下,断裂的 DNA 片段迁移出细胞核,形成拖尾,而完整 DNA 则保持圆形或轻微拖尾形态。最后用碘化丙啶(PI)染色,在荧光显微镜下即可观察到典型的“彗星”图像,通过尾长或尾矩即可量化 DNA 损伤程度。
本试剂盒适用于细胞凋亡/周期研究、药物遗传毒性评价、环境毒理学及放射生物学等场景,可检测培养细胞、外周血单核细胞、组织原代细胞等多种样本的 DNA 损伤水平。
                                    | 中文名称 | 彗星法DNA损伤分析试剂盒(3孔载玻片) | 
| 英文名称 | Comet Assay Kit (3-Well Slides) | 
| 产品货号 | KTA3040 | 
| 试剂盒组分 | • Comet Slides (3-Well) • 10× Lysis Solution • EDTA (500 mM) • Agarose (Low Melting Point) • Propidium Iodide (PI) (50×) • 40 mM Tris-HCl (pH 7.5)  | 
                                        
| 注意事项 | • 不同批次号、不同厂家之间的组分不要混用;否则,可能导致结果异常。 • 产品经过严苛质量检测。欢迎随时与我们联系,我们致力于客户成功和客户满意。  | 
                                        
| 保存建议 | 从发货之日起,4℃,避光保存 6 个月 | 
| 运输条件 | 冰袋运输(蓝冰) | 
| 警告 | 本文列出的产品仅供研究使用,不适用于人类或临床诊断。我们产品所推荐应用,不是建议使用我们的产品去违反任何专利或许可证。对于使用本产品可能发生的专利侵权或其他违规行为,我们不承担任何责任。 | 
| 试剂盒组分 | 规格 | 储存条件 | 
|---|---|---|
| Comet Slides (3-Well) | 5 (15 T) / 25 (75 T) | 4℃ | 
| 10× Lysis Solution | 15 mL (15 T) / 75 mL (75 T) | 4℃ | 
| EDTA (500 mM) | 25 mL (15 T) / 125 mL (75 T) | 4℃ | 
| Agarose (Low Melting Point) | 15 mL (15 T) / 15 mL×5 (75 T) | 4℃ | 
| Propidium Iodide (PI) (50×) | 20 μL (15 T) / 100 μL (75 T) | 4℃,避光保存 | 
| 40 mM Tris-HCl (pH 7.5) | 15 mL (15 T) / 75 mL (75 T) | 4℃ | 
| PBS(不含Mg2+和 Ca2+,pH 7.4) | - | - | 
Comet Slides (3-Well):即用型;使用前,平衡到室温;4℃保存。
10×Lysis Solution:即用型;使用前,平衡到室温;4℃保存。
EDTA (500 mM):即用型;使用前,平衡到室温;4℃保存。
Agarose (Low Melting Point):将 Agarose (Low Melting Point)瓶在 90-95℃的水浴中加热 20 min,直到 Agarose液化。将瓶子转移到 37℃水浴中 20 min保持液体状态。用不完的试剂分装后 4℃保存 6个月。Agarose颜色为黄色,是由于高温高压灭菌后导致,不会影响使用。
Propidium Iodide (PI) (50×):临用前配制,用 PBS稀释 50倍,浓度为 1×PI染料,现用现配,4℃避光保存。
40 mM Tris-HCl (pH 7.5):临用前配制,用 PBS稀释 100倍,浓度为 0.4 mM Tris-HCl (pH 7.5),4℃保存。
制备 100 mL 1×裂解缓冲液,配方如下:
| 试剂 | 用量 | 
|---|---|
| NaCl | 14.6 g | 
| EDTA (500 mM) | 20 mL | 
| 10×Lysis Solution | 10 mL | 
| DMSO | 10 mL(含血红素样品可选) | 
| 去离子水 | 添加到 90 mL | 
充分混匀,用 10 M NaOH调 pH至 10,然后用去离子水定容到 100 mL。使用前冷却 4℃至少 20 min。
注意:现配现用;对于含血红素样品,如血细胞和组织,可以加入终浓度为 10%的 DMSO,使用前放在 4℃至少 20 min。1×裂解缓冲液在室温下会看起来浑浊,但在 4℃时会变清澈,pH值也会保持 10 左右。
制备 100 mL 碱性解旋溶液,配方如下:
| 试剂 | 用量 | 
|---|---|
| NaOH | 1.2 g | 
| EDTA (500 mM) | 0.2 mL | 
| 去离子水 | 定容到 100 mL | 
注意:充分混匀。现配现用,使用前冷却 4℃至少 20 min。
根据所需的运行条件和检测灵敏度选择合适的电泳溶液。TBE优选用于细胞凋亡的分析,并且能够使用尾长而不是尾矩进行数据分析。TBE电泳可检测单链和双链 DNA断裂,并可能检测到一些 AP位点。碱性电泳更敏感,可以检测到较少量的 DNA损伤。碱性电泳可检测单链和双链 DNA断裂,大多数 AP位点和碱不稳定 DNA加合物。
| 试剂 | 用量 | 
|---|---|
| Tris Base | 10.8 g | 
| 硼酸 | 5.5 g | 
| EDTA(二钠盐) | 0.93 g | 
| 去离子水 | 定容到 1 L | 
注意:充分混匀。现配现用,使用前冷却 4℃至少 20 min。Tris Base即碱性 Tris。
| 试剂 | 用量 | 
|---|---|
| NaOH | 12 g | 
| EDTA (500 mM) | 2 mL | 
| 去离子水 | 定容到 1 L | 
注意:充分混匀。现配现用,使用前冷却 4℃至少 20 min。
注意:1.正式实验前,需做预实验,确定最佳铺胶的细胞数量和裂解时间。2.对于多个样品,将细胞样品与 Agarose混合液保持在 37℃以避免凝胶化。3.为避免紫外线对细胞样品造成损害,请在低/暗光条件下进行测定。
注意:根据所需的运行条件和检测灵敏度选择合适的电泳溶液。
注意:碱性电泳后,尽快拍照,如无法及时拍照,请把 Comet Slide浸在 PBS中,在 4度保护湿润。
通过测量细胞核的遗传物质(“彗星头部”)和产生的“尾部”之间的位移来量化 DNA损伤。尾矩和尾部 DNA%是分析彗星试验结果的两个最常见的参数。每个样品至少应分析 50-100个细胞。考虑到遗传物质的迁移以及尾部 DNA的相对数量时,尾力矩被认为是诱导 DNA损伤的合适指标。
尾部 DNA百分比(%) =尾部 DNA强度/细胞 DNA强度×100
尾矩可以使用以下方法之一进行测量:
(1)Olive尾矩=尾部 DNA百分比(%) ×尾矩长度(从头部中心到尾部中心测量,见图 1)
(2)尾部力矩=尾部 DNA百分比(%) ×尾部长度(见图 1)
彗星实验结果分析软件可通过 OpenComet、CASPlab和 Comet Assay IV(Perceptive Instruments)等进行分析。
图 1 彗星实验中的 DNA损伤。
DNA损伤按彗星尾部 DNA百分比(%)分为 5级:
| 级别 | DNA损伤百分比 | 损伤程度 | 
|---|---|---|
| 0级 | <5% | 无损伤 | 
| 1级 | 5-20% | 轻度损伤 | 
| 2级 | 20-40% | 中度损伤 | 
| 3级 | 40-95% | 高度损伤 | 
| 4级 | >95% | 重度损伤 | 
图 2. Jurkat细胞未经处理(左)或处理(右)用 20 μM依托泊苷处理 4 h,然后进行彗星试验(碱性电泳条件,21 V,电泳 20 min)。
数据仅供参考。
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