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彗星法DNA损伤分析试剂盒(3孔载玻片)

Comet Assay Kit (3-Well Slides)

产品货号
KTA3040

产品特点:

  • 试剂齐全:一次性提供 3 孔专用彗星玻片、低熔点琼脂糖、裂解液、PI 染料等全套组分,开盒即用。
  • 操作简便:无需传统多层琼脂糖繁琐铺胶,仅需简单混合-固化-裂解-电泳四步即可完成实验。
  • 结果可靠:3 孔设计使样本不易脱落,电泳条带清晰,重复性高。
  • 选择规格

    15T
    ¥1498
    现货(次日发货)
    75T
    ¥4198
    现货(次日发货)
    🎉 限时优惠

    买2送1活动进行中!购买任意2个规格产品,免费赠送100μL装一支。

    活动截止时间:2024年1月31日

    产品概述

    亚科因生物研发的彗星法DNA损伤分析试剂盒(3孔载玻片) (Comet Assay Kit, 3-Well Slides) 是一套基于单细胞凝胶电泳(SCGE)原理,专为细胞水平 DNA 损伤快速评估而设计的完整检测系统。通过 3 孔专用载玻片与即用型试剂组合,可在荧光显微镜下直观呈现 DNA 断裂“彗星”图谱,帮助研究者高效评价细胞状态。

    背景与原理

    当细胞受到辐射、氧化应激、药物或重金属等损伤因素作用后,DNA 可能发生单链或双链断裂。本试剂盒利用单细胞凝胶电泳(SCGE)技术,将单个细胞包埋于低熔点琼脂糖中,经裂解液去除细胞膜与组蛋白后,在碱性条件下使 DNA 解旋;随后在电场作用下,断裂的 DNA 片段迁移出细胞核,形成拖尾,而完整 DNA 则保持圆形或轻微拖尾形态。最后用碘化丙啶(PI)染色,在荧光显微镜下即可观察到典型的“彗星”图像,通过尾长或尾矩即可量化 DNA 损伤程度。

    应用领域

    本试剂盒适用于细胞凋亡/周期研究药物遗传毒性评价环境毒理学放射生物学等场景,可检测培养细胞、外周血单核细胞、组织原代细胞等多种样本的 DNA 损伤水平。

    彗星法DNA损伤分析试剂盒(3孔载玻片)

    产品参数

    中文名称 彗星法DNA损伤分析试剂盒(3孔载玻片)
    英文名称 Comet Assay Kit (3-Well Slides)
    产品货号 KTA3040
    试剂盒组分 • Comet Slides (3-Well)
    • 10× Lysis Solution
    • EDTA (500 mM)
    • Agarose (Low Melting Point)
    • Propidium Iodide (PI) (50×)
    • 40 mM Tris-HCl (pH 7.5)
    注意事项 • 不同批次号、不同厂家之间的组分不要混用;否则,可能导致结果异常。
    • 产品经过严苛质量检测。欢迎随时与我们联系,我们致力于客户成功和客户满意。
    保存建议 从发货之日起,4℃,避光保存 6 个月
    运输条件 冰袋运输(蓝冰)
    警告 本文列出的产品仅供研究使用,不适用于人类或临床诊断。我们产品所推荐应用,不是建议使用我们的产品去违反任何专利或许可证。对于使用本产品可能发生的专利侵权或其他违规行为,我们不承担任何责任。

    使用说明

    自备耗材

    • 荧光显微镜
    • 离心机、37℃水浴锅和沸水浴、水平电泳槽、可调节式移液枪及枪头
    • 去离子水、NaCl粉末、NaOH颗粒、硼酸、EDTA(二钠盐)、DMSO(可选)
    • 用于 pH调节的 10 M NaOH、70%乙醇

    试剂盒组分

    试剂盒组分规格储存条件
    Comet Slides (3-Well)5 (15 T) / 25 (75 T)4℃
    10× Lysis Solution15 mL (15 T) / 75 mL (75 T)4℃
    EDTA (500 mM)25 mL (15 T) / 125 mL (75 T)4℃
    Agarose (Low Melting Point)15 mL (15 T) / 15 mL×5 (75 T)4℃
    Propidium Iodide (PI) (50×)20 μL (15 T) / 100 μL (75 T)4℃,避光保存
    40 mM Tris-HCl (pH 7.5)15 mL (15 T) / 75 mL (75 T)4℃
    PBS(不含Mg2+和 Ca2+,pH 7.4)--

    试剂准备

    Comet Slides (3-Well):即用型;使用前,平衡到室温;4℃保存。

    10×Lysis Solution:即用型;使用前,平衡到室温;4℃保存。

    EDTA (500 mM):即用型;使用前,平衡到室温;4℃保存。

    Agarose (Low Melting Point):将 Agarose (Low Melting Point)瓶在 90-95℃的水浴中加热 20 min,直到 Agarose液化。将瓶子转移到 37℃水浴中 20 min保持液体状态。用不完的试剂分装后 4℃保存 6个月。Agarose颜色为黄色,是由于高温高压灭菌后导致,不会影响使用。

    Propidium Iodide (PI) (50×):临用前配制,用 PBS稀释 50倍,浓度为 1×PI染料,现用现配,4℃避光保存。

    40 mM Tris-HCl (pH 7.5):临用前配制,用 PBS稀释 100倍,浓度为 0.4 mM Tris-HCl (pH 7.5),4℃保存。

    1×裂解缓冲液

    制备 100 mL 1×裂解缓冲液,配方如下:

    试剂用量
    NaCl14.6 g
    EDTA (500 mM)20 mL
    10×Lysis Solution10 mL
    DMSO10 mL(含血红素样品可选)
    去离子水添加到 90 mL

    充分混匀,用 10 M NaOH调 pH至 10,然后用去离子水定容到 100 mL。使用前冷却 4℃至少 20 min。

    注意:现配现用;对于含血红素样品,如血细胞和组织,可以加入终浓度为 10%的 DMSO,使用前放在 4℃至少 20 min。1×裂解缓冲液在室温下会看起来浑浊,但在 4℃时会变清澈,pH值也会保持 10 左右。

    碱性解旋溶液(Alkaline Solution)

    制备 100 mL 碱性解旋溶液,配方如下:

    试剂用量
    NaOH1.2 g
    EDTA (500 mM)0.2 mL
    去离子水定容到 100 mL

    注意:充分混匀。现配现用,使用前冷却 4℃至少 20 min。

    电泳液的选择

    根据所需的运行条件和检测灵敏度选择合适的电泳溶液。TBE优选用于细胞凋亡的分析,并且能够使用尾长而不是尾矩进行数据分析。TBE电泳可检测单链和双链 DNA断裂,并可能检测到一些 AP位点。碱性电泳更敏感,可以检测到较少量的 DNA损伤。碱性电泳可检测单链和双链 DNA断裂,大多数 AP位点和碱不稳定 DNA加合物。

    1. TBE电泳液(TBE Electrophoresis Solution)

    试剂用量
    Tris Base10.8 g
    硼酸5.5 g
    EDTA(二钠盐)0.93 g
    去离子水定容到 1 L

    注意:充分混匀。现配现用,使用前冷却 4℃至少 20 min。Tris Base即碱性 Tris。

    2. 碱性电泳液 (Alkaline Electrophoresis Solution) (300 mM NaOH, 1 mM EDTA, pH>13)

    试剂用量
    NaOH12 g
    EDTA (500 mM)2 mL
    去离子水定容到 1 L

    注意:充分混匀。现配现用,使用前冷却 4℃至少 20 min。

    实验步骤

    A. 制样

    1. 在进行实验前,制备 1×裂解缓冲液、碱性解旋溶液和电泳液(见试剂制备),在 4℃冷却所有溶液。
    2. 将 Agarose (Low Melting Point)在 90-95℃的水浴中孵育 20 min液化,转移到 37℃的水浴中冷却保存 20 min。
    3. Comet Slide提前放置在 37℃环境中,每孔 100 μL Agarose加到 Comet Slide上完全覆盖,以创建基底层,水平转移至 4℃环境冷却 15 min。
    4. 准备细胞样本,如下所示:
    • 悬浮细胞:1,000 g离心 5 min,去掉上清液。预冷的 PBS清洗 1次,离心去掉上清液。PBS重悬细胞并计数,收集 1-5×105个细胞重悬于 1 mL PBS中。
    • 贴壁细胞:用细胞刮轻轻地从培养皿中取出细胞,将细胞悬液转移到离心管中,1,000 g离心 5 min,去掉上清液。预冷的 PBS清洗 1次,离心去掉上清液。PBS重悬细胞并计数,收集 1-5×105个细胞重悬 1 mL PBS中。
    • 组织:使用解剖剪刀,将一小块组织切成一小片,加入 1-2 mL冰冷的 PBS,其中含有 20 mM的 EDTA,静置 5 min,然后将上清液转移到离心管中。1,000 g离心 5 min,去掉上清液,PBS重悬细胞并计数,收集 1-5×105个细胞重悬 1 mL PBS中。
    5. 将细胞样品与 Agarose以 1:10的比例混合,立即取 75 μL混合液转移到 Agarose基底层的上面完全覆盖,而不干扰基底层。
    6. Comet Slide保持水平,4℃避光 15 min。
    7. 将 Comet Slide转移到装有预冷的 1×裂解缓冲液(约 25 mL/Comet Slide)的容器中,4℃避光裂解 30-60 min。
    8. 吸出 1×裂解缓冲液,用预冷的碱性解旋溶液(约 25 mL/Comet Slide)替换,4℃避光解旋 30 min。

    注意:1.正式实验前,需做预实验,确定最佳铺胶的细胞数量和裂解时间。2.对于多个样品,将细胞样品与 Agarose混合液保持在 37℃以避免凝胶化。3.为避免紫外线对细胞样品造成损害,请在低/暗光条件下进行测定。

    B. 电泳

    注意:根据所需的运行条件和检测灵敏度选择合适的电泳溶液。

    1. TBE 电泳:

    (1) 吸出碱性解旋溶液,加预冷的 TBE 电泳液,浸洗 5 min,重复 2次。
    (2) 小心地将 Comet Slide转移到水平电泳槽,加入适量的预冷的 TBE 电泳液到电泳槽,直到完全覆盖住 Comet Slide。
    (3) 以 1 V/cm向腔室施加电压 10-15 min(例如,腔室电极之间相距 35 cm,则施加 35 V电压),电压、电流可用改变电泳液面高低来调节。
    (4) 水平保持 Comet Slide,小心地将 Comet Slide从电泳室转移到装有预冷的去离子水(约 25 mL/Comet Slide)的干净容器中,浸洗 2 min,重复 3次。
    (5) 吸出去离子水,加预冷的 70%乙醇(约 25 mL/Comet Slide),浸洗 5 min。
    (6) 水平保持 Comet Slide,从 70%乙醇中取出 Comet Slide并风干。
    (7) Agarose和 Comet Slide完全干燥后,加入 50 μL/孔配置好的 1×PI染料,室温避光染色 10 min。
    (8) PBS洗 1次后使用荧光显微镜观察 Comet Slide,并拍照。

    2. 碱性电泳:

    (1) 小心地将 Comet Slide转移到水平电泳槽,加入适量的预冷的碱性电泳液到电泳槽,直到完全覆盖住 Comet Slide。
    (2) 以 1 V/cm向腔室施加电压 15-30 min(例如,腔室电极之间相距 35 cm,则施加 35 V电压),电压、电流可用改变电泳液面高低来调节。
    (3) 电泳后,将 Comet Slide水平转移到装有预冷的 0.4 mM Tris-HCl(pH 7.5)缓冲液(约 25 mL/Comet Slide)的容器中,4℃中和 3次,每次 10 min。
    (4) 弃去 Tris-HCl缓冲液,加入 50 μL/孔配置好的 1×PI染料,室温避光染色 10 min。
    (5) PBS洗 1次后使用荧光显微镜观察 Comet Slide,并拍照。

    注意:碱性电泳后,尽快拍照,如无法及时拍照,请把 Comet Slide浸在 PBS中,在 4度保护湿润。

    结果计算

    通过测量细胞核的遗传物质(“彗星头部”)和产生的“尾部”之间的位移来量化 DNA损伤。尾矩和尾部 DNA%是分析彗星试验结果的两个最常见的参数。每个样品至少应分析 50-100个细胞。考虑到遗传物质的迁移以及尾部 DNA的相对数量时,尾力矩被认为是诱导 DNA损伤的合适指标。

    尾部 DNA百分比(%) =尾部 DNA强度/细胞 DNA强度×100

    尾矩可以使用以下方法之一进行测量:

    (1)Olive尾矩=尾部 DNA百分比(%) ×尾矩长度(从头部中心到尾部中心测量,见图 1)

    (2)尾部力矩=尾部 DNA百分比(%) ×尾部长度(见图 1)

    彗星实验结果分析软件可通过 OpenComet、CASPlab和 Comet Assay IV(Perceptive Instruments)等进行分析。

    图 1 彗星实验中的 DNA损伤。

    定性方法

    DNA损伤按彗星尾部 DNA百分比(%)分为 5级:

    级别DNA损伤百分比损伤程度
    0级<5%无损伤
    1级5-20%轻度损伤
    2级20-40%中度损伤
    3级40-95%高度损伤
    4级>95%重度损伤

    示例

    图 2. Jurkat细胞未经处理(左)或处理(右)用 20 μM依托泊苷处理 4 h,然后进行彗星试验(碱性电泳条件,21 V,电泳 20 min)。

    数据仅供参考。

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