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594偶联试剂盒-LinKine™-AbFluor™
LinKine™ AbFluor™ 594 Labeling Kit
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活动截止时间:2024年1月31日
                            
                                
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LinKine™ AbFluor™ 594 Labeling Kit(LinKine™ AbFluor™ 594偶联试剂盒,货号 KTL0540)是一套专为抗体或蛋白质设计的即用型深红色荧光标记系统。试剂盒内已预活化 AbFluor™ 594 染料,可在标准实验流程下与目标蛋白高效偶联,并通过配套纯化柱快速去除游离染料,直接获得高纯度、高荧光强度的标记产物。
AbFluor™ 染料是一类高度水溶性的荧光探针,覆盖从紫外到近红外的全光谱范围,专为生物大分子标记而优化。其中 AbFluor™ 594 的激发/发射波长为 593 nm / 614 nm,是目前最亮的深红色染料之一,光稳定性显著优于 DyLight 594 与 Alexa Fluor 594 等同谱段产品。凭借创新的核心结构修饰,AbFluor™ 594 在复杂样本中仍能保持极低背景与极高信噪比,广泛适用于蛋白偶联、流式细胞术、共聚焦成像、Western blot 及多重荧光检测等场景。
本试剂盒适用于抗体、重组蛋白、酶、链霉亲和素等生物分子的荧光标记,生成的 AbFluor™ 594-蛋白偶联物可直接用于流式细胞分析、共聚焦/超高分辨显微成像、免疫荧光、ELISA、FRET 及体内示踪等实验。
                                    | 中文名称 | 594偶联试剂盒-LinKine™-AbFluor™ | 
| 英文名称 | LinKine™ AbFluor™ 594 Labeling Kit | 
| 产品货号 | KTL0540 | 
| 偶联物 | AbFluor™ 594 | 
| 试剂盒组分 | • 活化的 AbFluor™ 594 偶联物溶液 • AbFluor™ 594 偶联缓冲溶液 • 纯化柱(0.5 mL,50KD)  | 
                                        
| 注意事项 | • 待标记样本的初始浓度不应低于2 mg/ml。 • 请注意,缓冲液中不允许含有氨基的组分,这会影响偶联效果。 • 少量的BSA不会影响结果,建议使用PBS作为所需的缓冲液。  | 
                                        
| 保存建议 | 该试剂盒在-20℃条件下可保存6个月。 | 
| 运输条件 | 冰袋运输(蓝冰) | 
| 警告 | 本文列出的产品仅供研究使用,不适用于人类或临床诊断。我们产品所推荐应用,不是建议使用我们的产品去违反任何专利或许可证。对于使用本产品可能发生的专利侵权或其他违规行为,我们不承担任何责任。 | 
注意:该试剂盒所配纯化柱适用于分子量在 200 KD 到100 KD 的样本;如有未使用完的试剂,请及时密封保存于-20℃。
待标记样本的初始浓度应高于 2 mg/mL,建议蛋白浓度达到2.5 mg/mL 以上效果最佳,否则实验前需进行浓缩以提高浓度。待标记样本的组分(或储存缓冲液)应符合如下要求:
待标记样本的缓冲液应满足如下要求:
| 条件 | 要求 | 
|---|---|
| pH | 6.5-8.0 | 
| 无胺缓冲液 | MES, PBS, HEPES | 
| Chelating agents (e. g. EDTA) | ✓ | 
| 甘油 | < 50% | 
| BSA | < 0.1% | 
| 甘氨酸 | ✗ | 
| 含氨基成分 | ✗ | 
注意:请根据实际样品量,相应放大或缩小试剂盒各组分在反应体系中的体积。
不同规格建议的最适标记样本量和标记体系如下:
| 规格 | 最适标记的样本量 | 最适的标记体系 | 
|---|---|---|
| 3×100 µg | 3×100 µg | 3×50-3×75 µL | 
| 1 mg | 1 mg | 500-750 µL | 
以下操作步骤是以 3×100 µg 规格为例,其它规格的试剂用量请进行等比调整。如果需要调整体积,请保持样本量不变更改标记体系中 AbFluorTM 594 labeling solution、Activated AbFluorTM 594 solution 和去离子水的体积。
注意:步骤1/2属于标记步骤。
注意:步骤3/4/5属于纯化步骤;偶联物避光条件下可稳定保存一个月。若需长期储存,请分装并于 -20℃下避光保存,避免反复冻融,可加入同体积甘油。
C (mg/mL) = {[A280-(Amax×CF)]/1.4}×稀释因子
其中:C 是指实验收集的偶联物浓度;稀释因子是指在光度测量时的稀释倍数(详见备注);A280 和 Amax 分别是指在 280 nm 处的吸光度以及在最大吸收波长(AbFluorTM 594 的最大吸收波长为 593 nm)处的吸光度;CF 是校正因子,AbFluorTM 594 的 CF 值为 0.08;1.4 则是指 IgG (mL/mg) 的消光系数,AbFluorTM 594 的消光系数为 115,000。
DOL = (Amax × Mwt × 稀释因子)/(ε × C)
其中:Amax指在最大吸收波长处的吸光度(AbFluorTM 594 的最大吸收波长为 593 nm);稀释因子是指在光度测量时的稀释倍数;C 是指实验收集的偶联物浓度;Mwt 是指待标记样本的分子量;ε 是荧光染料的消光系数,AbFluorTM 594 的消光系数为 115,000。
注意:过柱洗脱的偶联物直接用于吸光度检测可能浓度过大,因此需要稀释到适当浓度(蛋白测定仪的浓度范围)。稀释倍数(即稀释因子)需要从起始样本质量以及洗脱得到的偶联物的总体积来进行预估,如未经稀释则稀释因子为 1。
答:如果浓缩后样本浓度仍小于 2 mg/mL 可适当调整标记体系的体积,但最终浓度应大于 1 mg/mL。步骤1中 AbFluorTM 594 labeling solution 的体积应为标记体系体积的 10%,步骤2中可不添加去离子水,Activated AbFluorTM 594 solution的体积保持不变,您也可以根据自己实验进行适当调整。
答:本产品配备的超滤管适用于分子量为 200 KD-100 KD 的样本。若您需要偶联的样本分子量大于 200 KD 或小于 100 KD,为保证偶联最佳效果,需另行配备大小合适的超滤管。
答:如果样本分子量与 AbFluorTM 594 相近,可在进行完此说明书对应的标记步骤后加入 30 µL 0.5 µM NH4 Cl,37℃下孵育 10 min 以淬灭游离的 AbFluorTM 594,无须进行此说明书对应的纯化步骤。
答:详见如下表格:
| 名称 | 最大激发光/发射光 (nm) | 消光系数 (ε) | 校正因子 (Cf) | 分子量 (Da) | 
|---|---|---|---|---|
| AbFluor ™ 488 | 490/515 | 70,000 | 0.1 | ~834 | 
| AbFluor ™ 555 | 555/565 | 150,000 | 0.08 | ~1077 | 
| AbFluor ™ 594 | 593/614 | 115,000 | 0.08 | ~927 | 
| AbFluor ™ 647 | 650/665 | 240,000 | 0.03 | ~1258 | 
| AbFluor ™ 680 | 680/701 | 140,000 | 0.32 | ~1111 | 
A: 是通用型的。
A: 推荐1mg的规格,选用超滤管3K的超滤管的型号。
A: 如按照说明书的操作进行实验,可保证超过90%的偶联效率。
A: 做吸光度检测和免疫实验检测。
A: 如果是普通蛋白分子的话,查询蛋白的氨基酸一级结构就可以知道是否有游离氨基。
杂志名称: Nature | 作者: Li, Yan, et al.
IF: 48.500 | 发表时间: 2025
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