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γ-谷氨酰半胱氨酸连接酶(GCL)活性检测试剂盒(微量法)-CheKine™
CheKine™ Micro γ-Glutamyl Cysteine Ligase (GCL) Activity Assay Kit
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活动截止时间:2024年1月31日
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CheKine™ γ-谷氨酰半胱氨酸连接酶(GCL)活性检测试剂盒(微量法)是一款基于比色法的微量检测工具,可在细胞、细菌、真菌、血清及动植物组织等多种生物样本中快速测定 GCL 的催化活性,为研究谷胱甘肽(GSH)合成通路的限速步骤提供可靠数据。
γ-谷氨酰半胱氨酸连接酶(GCL, γ-Glutamyl Cysteine Ligase)是谷胱甘肽(GSH)生物合成途径的限速酶,催化谷氨酸与半胱氨酸缩合生成 γ-谷氨酰半胱氨酸。GSH 作为细胞内最重要的非蛋白硫醇,其含量与 GSH/GSSG 比值直接受 GCL 活性调控;而 GSH 本身又通过负反馈机制抑制 GCL 活性,形成精密的自我调节网络。氧化剂、抗氧化剂、生长因子及炎症因子等多种刺激均可通过转录或翻译后修饰调节 GCL 表达与活性,因此 GCL 活性检测已成为细胞氧化应激、代谢重编程及药物作用机制研究的关键指标。
本试剂盒适用于细胞代谢、氧化应激、药物毒理、植物逆境生理及微生物代谢工程等领域的科研实验室,帮助研究人员定量评估 GCL 活性变化,进而解析 GSH 合成调控机制与细胞抗氧化能力。
| 中文名称 | γ-谷氨酰半胱氨酸连接酶(GCL)活性检测试剂盒(微量法)-CheKine™ |
| 英文名称 | CheKine™ Micro γ-Glutamyl Cysteine Ligase (GCL) Activity Assay Kit |
| 产品货号 | KTB1680 |
| 检测类型 | 氨基酸代谢 |
| 检测方法 | 比色法 |
| 试剂盒组分 | • Extraction Buffer • Reagent I A • Reagent I B • Reagent II • Reagent III • Reagent IV • Standard |
| 分子 | GCL |
| 检测指标 | GCL |
| 注意事项 | • 不同批次号、不同厂家之间的组分不要混用。 • 样品处理等过程均需要在冰上进行,且须在当日测定酶活力,以免影响其活力。如果是匀浆液,避免反复冻融。 • 勤换吸头,避免各组分之间的交叉污染。 • 混合或复溶组分时,避免产生气泡。 • 实验开始前,确保所有的组分及设备处于合适的温度。 |
| 保存建议 | 收到货后,请避光保存于-20℃。请参阅说明书中各个组件的存储条件,自发货之日起,按照推荐的保存条件,有效期为6个月。 |
| 运输条件 | 冰袋运输(蓝冰) |
| 警告 | 本文列出的产品仅供研究使用,不适用于人类或临床诊断。我们产品所推荐应用,不是建议使用我们的产品去违反任何专利或许可证。对于使用本产品可能发生的专利侵权或其他违规行为,我们不承担任何责任。 |
注意:浓硫酸具有强腐蚀性,请注意安全。配制过程中,可能会产生黑色固体,其不影响结果,注意吸取时不要将黑色固体吸入。该溶液配制完成后应为浅黄色,若为蓝色则已污染,不可再使用。
按下表所示用去离子水将 8 μmol/mL标准液稀释成 0.8、0.4、0.2、0.1、0.05、0.025、0.125 μmol/mL标准溶液。
| 序号 | 标准品体积 | 去离子水体积(µL) | 标准品浓度(μmol/mL) |
|---|---|---|---|
| Std.1 | 100 µL of 8 μmol/mL | 900 | 0.8 |
| Std.2 | 100 µL of Std.1(0.8 μmol/mL) | 100 | 0.4 |
| Std.3 | 100 µL of Std.2 (0.4 μmol/mL) | 100 | 0.2 |
| Std.4 | 100 µL of Std.3 (0.2 μmol/mL) | 100 | 0.1 |
| Std.5 | 100 µL of Std.4 (0.1 μmol/mL) | 100 | 0.05 |
| Std.6 | 100 µL of Std.5 (0.05 μmol/mL) | 100 | 0.025 |
| Std.7 | 100 µL of Std.6 (0.025 μmol/mL) | 100 | 0.0125 |
注意:每次实验,请使用新配制的标准品;配制好的标准品需要在 4 h之内使用。
注意:推荐使用新鲜样本,如果不立即进行实验,样本可在-80℃保存 1个月。样品处理等过程均需要在冰上进行,且须在当日测定酶活力,以免影响其活力。如果是匀浆液,避免反复冻融。细胞中 GCL活性测定时,细胞数目须在 300万-500万之间,细胞中 GCL的提取时可加 Extraction Buffer后超声波处理,不能用细胞裂解液处理细胞。
注意:如需要进行样本蛋白质浓度测定时,推荐用 Abbkine货号:KTD3001的蛋白质定量试剂盒(BCA法)。
| 试剂 | 空白管(μL) | 标准管(μL) | 测定管(μL) | 对照管(μL) |
|---|---|---|---|---|
| 样本 | 0 | 0 | 24 | 0 |
| Extraction Buffer | 0 | 0 | 48 | 100 |
| Working ReagentⅠ | 0 | 0 | 52 | 0 |
| Working ReagentⅡ | 0 | 0 | 12 | 12 |
| 混匀后盖紧,37℃水浴反应 15 min | - | - | - | - |
| ReagentⅢ | 0 | 0 | 60 | 60 |
| 样本 | 0 | 0 | 0 | 24 |
| 混匀后,室温(25℃左右)10,000 rpm,离心 10 min | - | - | - | - |
| 上清 | 0 | 0 | 100 | 100 |
| Different Concentration Std. | 0 | 100 | 0 | 0 |
| 去离子水 | 100 | 0 | 0 | 0 |
| Working Reagent IV | 100 | 100 | 100 | 100 |
混匀后盖紧,45℃水浴 10 min,冷却至室温后,取 180 μL上清加入微量玻璃比色皿或 96孔板在测定 660 nm处光吸收,尽快测完,分别记为 A 空、A 测定、A 标、A 对照。计算ΔA 测=A 测定-A 对照,ΔA 标=A 标准-A 空白,空白管只需做一个。
注意:测定吸光值时,请于水浴后 10-40 min内测完。样本测定前先取 2-3个样做预实验,如ΔA 测大于 2,应先用 Extraction Buffer稀释到适当倍数,使得吸光值在标准曲线范围内,计算公式中乘以相应稀释倍数。如果 A 测低于 0.005,可适当增加样本量。
注意:我们为您提供的计算公式,包括推导过程计算公式和简洁计算公式。两者完全相等。建议以加粗的简洁计算公式为最终计算公式。
以标准溶液浓度为 y 轴,ΔA 标为 x 轴,绘制标准曲线。将ΔA 测代入公式中(x)计算 y(μmol/mL)。
活性单位定义:37℃下,每毫克蛋白每分钟催化产生 1 μmol无机磷的 GCL酶活量为 1个酶活力单位。
GCL (U/mg prot)=(y×V 反总)÷(Cpr×V 样)÷T=0.54×y÷Cpr
活性单位定义:37℃下,每克样品每分钟催化产生 1 μmol无机磷的 GCL酶活量为 1个酶活力单位。
GCL (U/g 鲜重)=(y×V 反总)÷(W÷V 样总×V 样)÷T=0.54×y÷W
活性单位定义:37℃下,每 104个细胞或细菌每分钟催化产生 1 μmol无机磷的 GCL酶活量为 1个酶活单位。
GCL (U/104)=(y×V 反总)÷(500×V 样÷V 样总)÷T=1.08×10-3×y
活性单位定义:37℃下,每毫升液体每分钟催化产生 1 μmol无机磷的 GCL酶活量为 1个酶活单位。
GCL (U/mL)=(y×V 反总)÷V 样÷T=0.54×y
V 反总:反应总体积,0.196 mL;Cpr:上清液蛋白质浓度,mg/mL;V 样:加入样品体积,0.024 mL;T:反应时间,15 min;W:样品鲜重,g;V 样总:加入 Extraction Buffer的体积,1 mL;500:细胞或细菌总数,500万
A: 动物研究,植物研究,微生物研究等相关单位都应用比较多。
A: 生化试剂盒已充分验证,适合于植物、动物和微生物等多种物种。 对于在植物、动物和微生物等不同材料之间确实存在很大差异的指标,尤其是酶活性测定指标,我们分别研发和生产了针对同一指标的不同类型试剂盒,并在试剂盒名称和代号上做了明确区分,请用户仔细核对,选择合适的试剂盒类型。如有疑问,请联系support@abbkine.com,进行深入探讨。
A: 不建议用,分光光度计每次检测的样本个数不超过4个,无法做到数据检测的同步。
A: 检测孔的数量=样本个数+标准品数×重复次数+预留补测数量,如有疑问,请联系support@abbkine.com,进行深入探讨。
A: 可以,用超声进行破碎微生物细胞,再进行细胞上清的检测,如有疑问,请联系support@abbkine.com,进行深入探讨。
杂志名称: ACS Applied Materials & Interfaces | 作者: Li, Yaxin, et al.
IF: 8 | 发表时间: 2024
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