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680偶联试剂盒-LinKine™-AbFluor™

LinKine™ AbFluor™ 680 Labeling Kit

产品货号
KTL0580

产品特点:

  • 活化染料即开即用,无需额外活化步骤,显著缩短实验时间
  • 优化配方确保最佳染料/蛋白摩尔比,提高荧光信号并降低淬灭
  • 内置 50 KD 纯化柱,快速去除游离染料,获得高纯度标记蛋白
  • 近红外波段检测,组织自发荧光低,适合体内外高灵敏度成像
  • 选择规格

    3×100 μg
    ¥1689
    现货(次日发货)
    1 mg
    ¥2716
    现货(次日发货)
    🎉 限时优惠

    买2送1活动进行中!购买任意2个规格产品,免费赠送100μL装一支。

    活动截止时间:2024年1月31日

    产品概述

    LinKine™ AbFluor™ 680偶联试剂盒 (LinKine™ AbFluor™ 680 Labeling Kit) 是一套专为抗体或蛋白快速标记设计的即用型试剂盒,利用近红外荧光染料 AbFluor™ 680 与目标蛋白共价偶联,生成高亮度、低背景的荧光探针,适用于后续流式、成像、Western blot等多种检测场景。

    AbFluor™ 染料是一系列高度水溶性的荧光染料,覆盖从紫外到近红外的完整光谱,特别适合对蛋白质、核酸等生物大分子进行标记。其中AbFluor™ 680 的激发/发射波长为 681 nm / 698 nm,与 Cy5.5、Alexa Fluor 680 光谱位置相近,却拥有更优异的光稳定性与荧光亮度。试剂盒中提供的活化 AbFluor™ 680 染料已预先活化,可直接与蛋白伯胺基团反应形成稳定共价键;配套的纯化柱可高效去除游离染料,确保标记蛋白的高回收率与低非特异背景。

    应用领域

    该试剂盒广泛应用于抗体标记、蛋白示踪、免疫荧光、流式细胞术、小动物活体成像等需要近红外检测的研究场景,特别适合需要高信噪比、深层组织穿透的实验设计。

    680偶联试剂盒-LinKine™-AbFluor™

    产品参数

    中文名称 680偶联试剂盒-LinKine™-AbFluor™
    英文名称 LinKine™ AbFluor™ 680 Labeling Kit
    产品货号 KTL0580
    偶联物 AbFluor™ 680
    试剂盒组分 • 活化的 AbFluor™ 680 偶联物溶液
    • AbFluor™ 680 偶联缓冲溶液
    • 纯化柱(0.5 mL,50KD)
    注意事项 • 待标记样本的初始浓度不应低于2 mg/ml。
    • 请注意,缓冲液中不允许含有氨基的组分,这会影响偶联效果。
    • 少量的BSA不会影响结果,建议使用PBS作为所需的缓冲液。
    保存建议 该试剂盒在-20℃条件下可保存6个月。
    运输条件 冰袋运输(蓝冰)
    警告 本文列出的产品仅供研究使用,不适用于人类或临床诊断。我们产品所推荐应用,不是建议使用我们的产品去违反任何专利或许可证。对于使用本产品可能发生的专利侵权或其他违规行为,我们不承担任何责任。

    使用说明

    实验步骤

    注意:请根据实际样品量,相应放大或缩小试剂盒各组分在反应体系中的体积。

    不同规格建议的最适标记样本量和标记体系如下:

    规格最适标记的样本量最适的标记体系
    3 ×100 µg3×100 µg3×50-3×75 µL
    1 mg1 mg500-750 µL

    以下操作步骤是以 3×100 µg 规格为例,其它规格的试剂用量请进行等比调整。如果需要调整体积,请保持样本量不变更改标记体系中 AbFluorTM 680 labeling solution、Activated AbFluorTM 680 solution 和去离子水的体积。

    1. 向待标记样本溶液中加入 15 µL AbFluorTM 680 labeling solution,用移液器温和混匀。
    2. 吸取 7.5 µL Activated AbFluorTM 680 solution 至步骤 1 反应液中,加去离子水至 150 µL(注:此体积为标记体系),温和混匀,37℃避光静置 1 h。
    3. 注意:步骤 1/2 属于标记步骤。

    4. 向步骤 2 反应液中加入适量 PBS(定容至约 500 µL),温和混匀,将溶液移至纯化柱,12,000 g、4℃、离心 10 min。
    5. 弃滤液,加适量 PBS(定容至约 500 µL)到纯化柱,4℃、12,000 g、离心 10 min。
    6. 取出纯化柱倒置于干净离心管中,4℃、4,000 g、离心 2 min,离心管收集到的溶液即为偶联产物。
    7. 注意:步骤 3/4/5 属于纯化步骤;偶联物 4℃避光条件下可稳定保存一个月。若需长期储存,请分装并于-20℃下避光保存,避免反复冻融,可加入同体积甘油。

    结果计算

    1. 偶联物浓度的计算:
    2. C (mg/mL) = {[A280-(Amax×CF)]/1.4}×稀释因子

      其中:C 是指实验收集的偶联物浓度;稀释因子是指在光度测量时的稀释倍数(详见备注); A280和 Amax分别是指在 280 nm 处的吸光度以及在最大吸收波长(AbFluorTM 680 的最大吸收波长为 680 nm)处的吸光度;CF 是校正因子,AbFluor™ 680 的 CF 值为 0.32;1.4 则是指 IgG(mL/mg)的消光系数,AbFluor™ 680 的消光系数为 140,000。

    3. 偶联物标记程度(degree of labeling, DOL)的计算:
    4. DOL=(Amax×Mwt×稀释因子)/(ε×C)

      其中:Amax 指在最大吸收波长处的吸光度(AbFluor™ 680 的最大吸收波长为 680 nm);稀释因子是指在光度测量时的稀释倍数; C 是指实验收集的偶联物浓度;Mwt 是指待标记样本的分子量;ε 是荧光染料的消光系数,AbFluor™ 680 的消光系数为 140,000。

    注意:过柱洗脱的偶联物直接用于吸光度检测可能浓度过大,因此需要稀释到适当浓度(蛋白测定仪的浓度范围)。稀释倍数(即稀释因子)需要从起始样本质量以及洗脱得到的偶联物的总体积来进行预估,如未经稀释则稀释因子为 1。

    常见问题

    问 1:浓缩后样本浓度仍低于 2 mg/mL?
    答 1:如果浓缩后样本浓度仍小于 2 mg/mL 可适当调整标记体系的体积,但最终浓度应大于 1 mg/mL。步骤 1 中 AbFluorTM 680 labeling solution 的体积应为标记体系体积的 10%,步骤 2 中可不添加去离子水,Activated AbFluorTM 680 solution 的体积保持不变,您也可以根据自己实验进行适当调整。
    问 2:待标记样本分子量大小不同,如何选择合适的纯化柱?
    答 2:本产品配备的超滤管适用于分子量为 100 KD-200 KD 的样本。若您需要偶联的样本分子量大于 200 KD 或小于 100 KD,为保证偶联最佳效果,需另行配备大小合适的超滤管。
    问 3:待标记样本分子量与 AbFluorTM 680 相近?
    答 3:如果样本分子量与 AbFluorTM 680 相近,可在进行完此说明书对应的标记步骤后加入 30 µL 0.5 µM NH4Cl,37℃下孵育 10 min,以淬灭游离的 AbFluorTM 680,无须进行此说明书对应的纯化步骤。
    问 4:AbFluorTM系列荧光染料的相关参数?
    答 4:祥见如下表格:
    名称最大激发光/发射光 (nm)消光系数 (ε)校正因子 (Cf)分子量 (Da)
    AbFluor™ 488490/51570,0000.1~834
    AbFluor™ 555555/565150,0000.08~1077
    AbFluor™ 594593/614115,0000.08~927
    AbFluor™ 647650/665240,0000.03~1258
    AbFluor™ 680680/701140,0000.32~1111

    注意事项

    1. 不同批次号、不同的厂家的组分不要混用;否则,可能导致结果异常。
    2. 混合或复溶组分时,避免产生气泡。如有未使用完的试剂,请及时密封保存于-20℃。
    3. 勤换吸头,避免各组分之间的交叉污染。
    4. 保持好的实验习惯,穿戴好手套、实验服、口罩、防目镜等防护工具后再开始实验。

    常见问题

    Q: 如何加入蛋白样本和标记工作液,它们的量应如何计算?

    A: 按照说明书的比例,100ug抗体,加入的反应液为2.5ul,加水最后是定容到50UL,根据抗体的重量来计算反应液Activated AbFluor 680 solution的量。

    Q: 可以对普通抗体进行标记吗?

    A: 可以,该试剂盒是通用型的。

    Q: 该试剂盒是多物种通用型吗?

    A: 是通用型的。

    Q: 待偶联物是IL-10,分子量是18.6kD,估计是要偶联1mg的蛋白, 买个多大规格的?

    A: 推荐1mg的规格,选用超滤管3K的超滤管的型号。

    Q: 多少样本可以偶联上标记物?

    A: 如按照说明书的操作进行实验,可保证超过90%的偶联效率。

    Q: 怎么判断样本偶联成功?

    A: 做吸光度检测和免疫实验检测。

    Q: 怎么判断蛋白上是否有游离的氨基?

    A: 如果是普通蛋白分子的话,查询蛋白的氨基酸一级结构就可以知道是否有游离氨基。

    文献引用

    请等待最新文献信息更新。

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